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小麥源性成分探針?lè)晒舛縋CR試劑盒實(shí)驗(yàn)方法步驟

2022
03-17

15:39:24

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小麥源性成分探針?lè)晒舛縋CR試劑盒實(shí)驗(yàn)方法步驟:


方法


1:在冰浴中,按以下次序?qū)⒏鞒煞旨尤胍粺o(wú)菌0.5ml離心管中。     


10×PCR buffer                   


5 μl     dNTP mix (2mM)             


4 μl     引物1(10pM)                 


2 μl     引物2(10pM)                 


2 μl     Taq酶 (2U/μl)               


1 μl     DNA模板(50ng-1μg/μl)  


1 μl      加ddH2O至 50 μl  


視PCR儀有無(wú)熱蓋,不加或添加石蠟油。


2調(diào)整好反應(yīng)程序。將上述混合液稍加離心,立即置PCR儀上,執(zhí)行擴(kuò)增。一般:在93℃預(yù)變性3-5min,進(jìn)入循環(huán)擴(kuò)增階段:93℃ 40s → 58℃ 30s → 72℃ 60s,循環(huán)30-35次,在72℃ 保溫7min。


3結(jié)束反應(yīng),PCR產(chǎn)物放置于4℃待電泳檢測(cè)或-20℃長(zhǎng)期保存。


4PCR的電泳檢測(cè):如在反應(yīng)管中加有石蠟油,需用100μl氯仿進(jìn)行抽提反應(yīng)混合液,以除去石蠟油;否則,直接取5-10μl電泳檢測(cè)。


PCR實(shí)驗(yàn)步驟


典型的PCR由(1)高溫變性模板;(2)引物與模板退火;(3)引物沿模板延伸三步反應(yīng)組成一個(gè)循環(huán),通過(guò)多次循環(huán)反應(yīng),使目的DNA得以迅速擴(kuò)增。其主要步驟是:


將待擴(kuò)增的模板DNA置高溫下(通常為93℃-94℃)使其變性解成單鏈;


人工合成的兩個(gè)寡核苷酸引物在其合適的復(fù)性溫度下分別與目的基因兩側(cè)的兩條單鏈互補(bǔ)結(jié)合,兩個(gè)引物在模板上結(jié)合的位置決定了擴(kuò)增片段的長(zhǎng)短;


耐熱的DNA聚合酶(Taq酶)在72℃將單核苷酸從引物的3’端開(kāi)始摻入,以目的基因?yàn)槟0鍙?’→3’方向延伸,合成DNA的

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